Ante las limitaciones de la caracterización morfológica en especímenes incompletos, producto del tráfico ilegal de fauna silvestre, el análisis molecular surge como una herramienta de identificación indispensable. Este estudio evaluó la eficiencia de extracción del ADN en 50 muestras de sangre y 44 de heces de aves silvestres, pertenecientes al Parque de la Conservación de Medellín. La pureza y la concentración del material genético se determinaron por espectrofotometría y agarosa, además, su funcionalidad se confirmó mediante la amplificación del marcador citocromo c oxidasa I (COXI), por reacción en cadena de la polimerasa (PCR). Las diferencias métricas entre ambas matrices biológicas se analizaron estadísticamente en el software R (v. 4.2.2; p < 0,05). En términos cuantitativos, las muestras de sangre presentaron un rendimiento significativamente mayor (mediana de 34,5 ng/μL) frente a las heces (mediana de 6,05 ng/μL; p = 0,0013). Asimismo, se observaron diferencias estadísticamente significativas en la pureza del ADN (χ² = 42,162; p < 0,001), cuando el 42,9 % de las muestras de sangre alcanzaron una relación 260/280 óptima (1,8-2), en comparación con el 12,5 % de las heces (p = 0,0068). A pesar de que la sangre evidenció parámetros de concentración y calidad superiores, ambas muestras permitieron la correcta amplificación del fragmento COXI mediante PCR. Esto confirma que, si bien la sangre es una matriz más eficiente, las muestras de heces son adecuadas y funcionales para desarrollar estudios genéticos en aves. En particular, el uso de heces representa una alternativa valiosa en trabajos de campo, al obtener material genético sin necesidad de recurrir a la captura y manipulación directa de los individuos.
Sistema de Información sobre Biodiversidad (SiB) Colombia [página web]. Biodiversidad de Colombia en el mundo. Bogotá: SiB Colombia. 2026. https://cifras.biodiversidad.co/
Hinsley A, Willis J, Dent AR, Oyanedel R, Kubo T, Challender DWS. Trading species to extinction: Evidence of extinction linked to the wildlife trade. Cambridge Prisms: Extinction. 2023;(1):e10. https://doi.org/10.1017/ext.2023.7
Asprilla-Perea J, Serna-Agudelo J, Palacios-Aprilla Y. Diagnóstico sobre el decomiso de fauna silvestre en el departamento del Chocó (Pacífico norte colombiano). Rev. U. D. C. A. Act. & Div. Cient. 2013 jun. 30;16(1):175-184. https://tinyurl.com/2y8psuvo
Ministerio de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial (MinVivienda, Colombia). Resolución 2064 del 2010, por la cual se reglamentan las medidas posteriores a la aprehensión preventiva, restitución o decomiso de especímenes de especies silvestres de fauna y flora terrestre y acuática y se dictan otras disposiciones. Bogotá: MinVivienda; 2010. https://tinyurl.com/2dzcy7q6
Paz A, González M, Crawford A. Códigos de barras de la vida: introducción y perspectiva. Acta Biol. Colomb. 2011 sep.;16(3):161-176.
Aquadro CF, Greenberg BD. Human mitochondrial adn variation and evolution: Analysis of nucleotide sequences from seven individuals. Genetics. 1983 feb.;103(2):287-312. https://doi.org/10.1093/genetics/103.2.287
Dong Z, Wang Y, Li C, Li L, Men X. Mitochondrial adn as a molecular marker in insect ecology: Current status and future prospects. Ann. Entomol. Soc. Am. 2021 jul.;114(4):470-476. https://doi.org/10.1093/aesa/saab020
Hebert PDN, Stoeckle MY, Zemlak TS, Francis CM. Identification of birds through dna barcodes. PLoS Biol. 2004 sep. 28;2(10):e312. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.0020312
González MA, Arenas-Castro H, editores. Recolección de tejidos biológicos para análisis genéticos. Bogotá: Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt; 2017. 33 p. https://tinyurl.com/2afpv7cf
Taberlet P, Waits LP, Luikart G. Noninvasive genetic sampling: Look before you leap. Trends Ecol Evol. 1999 ag.;14(8):323-327. https://doi.org/10.1016/s0169-5347(99)01637-7
Alejos-Velázquez LP, Aragón-Martínez MC, Cornejo Romero A. Extracción y purificación de ADN. En Cornejo-Romero A, Serrato-Díaz A, Rendón-Aguilar B, Rocha-Munive MG, editores. Herramientas moleculares aplicadas en ecología: aspectos teóricos y prácticos. Ciudad de México: Instituto Nacional de Ecología y Cambio Climático. 2014; p. 1-25.
Soto-Calderón ID, Salazar-Meneses MF, Maldonado AM, Mendoza AP, Valle-Useche CM, Ussa-Pérez DA, editores. Guía para la colecta de muestras biológicas de especies silvestres para análisis genéticos. Antioquia: Universidad de Antioquia. 2023; p. 24.
Reinoso EB, Dieser SA, Moliva MV. Manual de herramientas moleculares: conceptos básicos y técnicas empleadas en el estudio de la genética microbiana. Río Cuarto: Universidad Nacional de Río Cuarto; 2022.
Lucena-Aguilar G, Sánchez-López AM, Barberán- Aceituno C, Carrillo-Ávila JA, López-Guerrero JA, Aguilar-Quesada R. DNA source selection for downstream applications based on dna quality indicators analysis. Biopreserv Biobank. 2016 ag.;14(4):264-270. https://doi.org/10.1089/bio.2015.0064
Acuña-Balbuena AB, Núñez-Giménez MC, Ortiz N, Santander-Díaz L, Coronel-Cristaldo R, Cardozo L, et al. Comparación de dos métodos para la evaluación de la calidad del ADN obtenido mediante la técnica del CTAB para muestras de plantas medicinales de Paraguay. Rev. Estud. Investig. Saber Acad. 2023;17(17):e2023018.
Hebert PDN, Stoeckle MY, Zemlak TS, Francis CM. Identification of birds through dna barcodes. PLoS Biol. 2004 sep. 28;2(10):e312. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.0020312
National Center for Biotechnology Information (NCBI). OR537574.1 [página web]. Bethesda: National Library of Medicine. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/OR537574.1
Dilley K, Pagan F, Chapman B. Methods for ensuring the highest DNA concentration and yield in future and retrospective trace DNA extracts. Sci Justice. 2021 mar.;61(2):193-197. https://doi.org/10.1016/j.scijus.2020.11.005
Kohn MH, Wayne RK. Facts from feces revisited. Trends Ecol Evol. 1997 jun.;12(6):223-227. https://doi.org/10.1016/S0169-5347(97)01050-1
Doussang D, Palma C, Grandón-Ojeda A, Moreno L, Zambrano B, Pavez E, et al. Hematological and serum chemistry reference values of captive Black-chested Buzzard-Eagles (Geranoaetus melanoleucus). Ornitol Neotrop. 2023;34(1):24-28. https://doi.org/10.58843/ornneo.v34i1.1061
Cambrone C, Motreuil S, Reyes FO, Landestroy MA, Cézilly F, Bezault E. Obtaining DNA samples from sensitive and endangered bird species: A comparison of saliva and blood samples. Ardeola. 2022;69(2):263-278. https://doi.org/10.13157/arla.69.2.2022.sc1
Al-Shuhaib MBS. A minimum requirements method to isolate large quantities of highly purified DNA from one drop of poultry blood. J Genetics. 2018 ag. 24;97(4):e87-e94.
Hart ML, Meyer A, Johnson PJ, Ericsson AC. Comparative evaluation of DNA extraction methods from feces of multiple host species for downstream next-generation sequencing. PLoS One. 2015 nov. 24;10(11):e0143334. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0143334
Feller JD, Colton L. Comparison of commercially available DNA and RNA extraction kits for wildlife feces collected from the environment. BioTechniques. 2024;76(9):463-472. https://doi.org/10.1080/07366205.2024.2397284
Rohland N, Hofreiter M. Ancient DNA extraction from bones and teeth. Nat Protoc. 2007;2(7):1756- 1762. https://doi.org/10.1038/nprot.2007.247
Beja‐Pereira A, Oliveira R, Alves PC, Schwartz MK, Luikart G. Advancing ecological understandings through technological transformations in noninvasive genetics. Mol Ecol Resour. 2009 sep.;9(5):1279-1301. https://doi.org/10.1111/j.1755-0998.2009.02699.x
King C, Debruyne R, Kuch M, Schwarz C, Poinar H. A quantitative approach to detect and overcome PCR inhibition in ancient DNA extracts. Biotechniques. 2009 nov.;47(5):941-949. https://doi.org/10.2144/000113244
Schulze-Johann K, Bauer H, Wiegand P, Pfeiffer H, Vennemann M. Detecting DNA damage in stored blood samples. Forensic Sci Med Pathol. 2023 mzo.;19(1):50-59. https://doi.org/10.1007/s12024-022-00549-3
Hajibabaei M, Singer GAC, Hebert PDN, Hickey, DA. DNA barcoding: How it complements taxonomy, molecular phylogenetics and population genetics. Trends Genet. 2007 abr.;23(4):167-172. https://doi.org/10.1016/j.tig.2007.02.001
Barboza CM, Cocchi M, de Souza TCP, Fernandes MES, Junior PC, Batista HB de CR. Sequenciamento parcial do gene Citocromo C oxidase (COI) para determinação de espécies de morcegos enviados para diagnóstico de raiva no Instituto Pasteur. Braz J Develop. 2023 en. 11;9(1):2259-2271. https://doi.org/10.34117/bjdv9n1-155
Wai T, Ao A, Zhang X, Cyr D, Dufort D, Shoubridge EA. The role of mitochondrial DNA copy number in mammalian fertility. Biol Reprod. 2010 jul.;83(1):52-62. https://doi.org/10.1095/biolreprod.109.080887

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