Frecuencia del aislamiento bacteriano y patrones de sensibilidad en yeguas criollas colombianas diagnosticadas con endometritis

Resumen

<p>La endometritis bacteriana en las yeguas es uno de los principales problemas en la reproducción equina. A causa de diagnósticos inadecuados, los tratamientos antibióticos generalmente fracasan, lo que aumenta los casos de infertilidad en las hembras. En esta investigación se analizaron 90 yeguas que tenían signos de subfertilidad como abortos, retención placentaria, repetición de celos, secreción vulvar, entre otros. Fueron diagnosticadas por examen clínico reproductivo, ultrasonografía y cultivo microbiológico, mediante la técnica de hisopado uterino, y se les realizó antibiograma, en el cual se evaluaron los sensidiscos de penicilina G procaínica, gentamicina, ceftiofur, cefquinoma, amikacina y ampicilina. Según los resultados obtenidos, en el laboratorio microbiológico se encontró que E. coli fue la bacteria que creció con mayor frecuencia, con 21,11 % (19/90), seguida de Staphylococcus spp., con 11,11 % (10/90). En el aislamiento de E. coli se obtuvo que la bacteria presentó una mayor sensibilidad hacia amikacina, seguido de ceftiofur y cefquinoma. A su vez, Staphylococcus spp. fue más sensible frente a antibióticos como ceftiofur y cefquinoma. Los agentes bacterianos de espectro gramnegativo presentaron altos porcentajes de sensibilidad con respecto a antibióticos como amikacina, ceftiofur, cefquinoma y gentamicina</p>
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Referencias

Morales Muñoz PC, Castro Sánchez RA. Estimación de la integridad uterina en yeguas Pura Raza Chilena y su asociación con edad y número de partos. Rev Investig Vet Perú. 2018;29(2):565-74. https://doi.org/10.15381/rivep.v29i2.14489

Benko T, Boldizar M, Novotny F, Hura V, Valocky I, Dudrikova K, Karamanova M, Petrovic V. Incidence of bacterial pathogens in equine uterine swabs, their antibiotic resistance patterns, and selected reproductive indices in English thoroughbred mares during the foal heat cycle. Veterinarni Medicina. 2015;60(11):613-20. https://doi.org/10.17221/8529-VETMED

LeBlanc MM, Causey RC. Clinical and subclinical endometritis in the mare: Both Threats to Fertility. Reprod Domest Anim. 2009;44(supl. 3):10-22. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2009.01485.x

Eaton S, Raz T, Chirino-Trejo M, Bergermann J. Comparison of endometrial inflammation following intrauterine inoculation with genital strains of Streptococcus equi subsp zooepidemicus or Escherichia coli in the mare. Anim Reprod Sci. 2010;121(supl. 1-2);101-2. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2010.04.167

Burleson MD, LeBlanc MM, Riddle WT, Hendricks K. Endometrial microbial isolates are associated with different ultrasonographic and endometrial cytology findings in Thoroughbred mares. AAEP Proceedings. 2010;56:317

Overbeck W, Witte TS, Heuwieser W. Comparison of three diagnostic methods to identify subclinical endometritis in mares. Theriogenology. 2011;75(7):1311-8. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2010.12.002

Albihn A, Båverud V, Magnusson U. Uterine microbiology and antimicrobial susceptibility in isolated bacteria from mares with fertility problems. Acta Vet Scand. 2003;44(3-4):121-9. https://doi.org/10.1186/1751-0147-44-12110

Gores-Lindholm AR, LeBlanc MM, Causey R, Hitchborn A, Fayrer-Hosken RA, Kruger M, et al. Relationships between intrauterine infusion of N-acetylcysteine, equine endometrial pathology, neutrophil function, post-breeding therapy, and reproductive performance. Theriogenology. 2013;80(3):218-27. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2013.03.026

Pacheco S. Identification of aerobic pathogenic bacteria in the uterus of mares Peruvian Paso with uterine swab. Spermova. 2011;1(1):116-8

Rasmussen CD, Petersen MR, Bojesen AM, Pedersen HG, Lehn-Jensen H, Christoffersen M. Equine infectious endometritis-clinical and subclinical cases. J Equine Vet Sci. 2014;35(2):95-104

Frontoso R, De Carlo E, Pasolini M, van der Meulen K, Pagnini U, Iovane G, et al. Retrospective study of bacterial isolates and their antimicrobial susceptibilities in equine uteri during fertility problems. Res Vet Sci. 2008;8:1-6

Anzai T, Walker JA, Blair MB, Chambers TM, Timoney JF. Comparison of the phenotypes of streptococcus zooepidemicus isolated from tonsils of healthy horses and specimens obtained from foals and donkeys with pneumonia. Am J Vet Res. 2000;61(2):162-6. https://doi.org/10.2460/ajvr.2000.61.162

Salasia SI, Wibawan IW, Pasaribu FH, Abdulmawjood A, Lammler C. Persistent occurrence of a single streptococcus equi subsp. Zooepidemicus clone in the pig and monkey population in indonesia. J Vet Sci. 2004;5:263-265. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/15365243/

Petersen MR, Nielsen JM, Lehn-Jensen H, Bojensen AM. Streptococcus Equi subspecies Zooepidemicus resides deep in the chronicaly infected endometrium of the mare. Clin Theriogenology. 2009;1:161-7

Nielsen JM. Endometritis in the mare: a diagnostic study comparing cultures from swab and biopsy. Theriogenology. 2005;64(3):510-8. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2005.05.034

Robinson CS, Timofte D, Singer ER, Rimmington L, Rubio-Martínez LM. Prevalence and antimicrobial susceptibility of bacterial isolates from horses with synovial sepsis: A cross-sectional study of 95 cases. Vet J. 2016;216:117-21. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2016.07.004

Papa FO, Melo CM, Monteiro GA, Papa PM, Guasti PN, Maziero RR, et al. Equine perineal and vulvar conformation correction using a modification of pouret´s technique. J Equine Vet Sci. 2014;34(3):459-64. https://doi.org/10.1016/j.jevs.2013.07.019

Scofield D, Black J, Wittenburg L, Gustafson D, Ferris R, Hatzel J, Traub-Dargatz J, Mccue P. Endometrial tissue and blood plasma concentration of ceftiofur and metabolites following intramuscular administration of ceftiofur crystalline free acid to mares. Equine Vet J. 2014;46(5):606-10. https://doi.org/10.1111/evj.12192

Acosta Urrea A, Álvarez Rivera AE. Estudio retrospectivo de cultivos endometriales determinando los agentes bacterianos y su resistencia o sensibilidad a un grupo de antimicrobianos en yeguas [tesis de grado]. Bogotá [internet]: Universidad de La Salle [citado 2019 mar 15]. Disponible en https://ciencia.lasalle.edu.co/cgi/viewcontent.cgi?article=1244&context=medicina_veterinaria

Collard WT, Cox SR, Lesman SP, Grover GS, Boucher JF, Hallberg JW, et al. Pharmacokinetics of ceftiofur crystalline-free acid sterile suspension in the equine. Vet. Pharmacol. 2011;34(5):476-81. https://doi.org/10.1111/j.1365-2885.2011.01266.x

Ferris RA. Therapeutics for infectious endometritis: a clinical perspective. Rev Bras Reprod Anim. 2017;41(1):175-9. https://pesquisa.bvsalud.org/bvs-vet/resource/pt/vti-17298

Canisso IF, Coutinho DS. Bacterial endometritis. En: current therapy in equine medicine. 7a ed. St. Louis, MO: Elsevier; 2015. p. 683-688. https://doi.org/10.1016/B978-1-4557-4555-5.00163-1

Hurtgen JP. Pathogenesis and treatment of endometritis in the mare: a review. Theriogenology. 2006;66(3):560-6. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2006.04.006

Rodriguez JS, Han S, Nielsen S, Pearson LK., Gay JM, Tibary A. Consequences of intrauterine enrofloxacin infusion on mare endometrium. J Equine Vet Sci. 2012;32(2):106-11. https://doi.org/10.1016/j.jevs.2011.08.003

Pedersoli WM, Fazeli MH, Haddad NS, Ravis WR, Carson RL. Endometrial and serum gentamicin concentration in pony mares given repeated intrauterine infusion. Am J Vet Res. 1985;46(5):1025-8

Guérin-Faublée V, Carret G, Houffschmitt P. In vitro activity of 10 antimicrobial agents against bacteria isolated from cows with clinical mastitis. 2003;152(15):466-71. https://doi.org/10.1136/vr.152.15.466

Palabras clave

bacterias
cultivo uterino
endometritis
reproducción
yegua