Dynamics of Anaplasma marginale Active Infection and Antibodies in Calves

Abstract

<p>Bovine species has been historically of high importance to the human beings as a provision animal. Therefore, it is highly important to care and protect this species. There are different diseases attacking the bovines around the world, such as the bovine anaplasmosis. This non-experimental research in the field aims to evaluate the dynamics of anti-Anaplasma antibodies and to determine when the animal has an active infection. To do so, a population of 35 female calves was used from the production unit in the town Crespo, Lara State, Venezuela. Female calves, from 0 to 7 days born, were taken blood samples in test tubes with anticoagulant. Then a white smear test was carried out and the hematocrit was determined. Samples without anticoagulant were taken to do an indirect immunofluorescence test. The calves were taken blood samples every 15 days in order to complete 12 samples from each individual calf. For the data analysis, the statistical test X2 from the software Epi Info v.3.5.4 was used. Positive tests accounted for 79.05 % of the samples and seropositiveness for Anaplasma marginale reached 100%. It is concluded that the high values resulting from the serologic tests indicate that these animals have an immune memory, which means, in turn, that they were not necessarily infected at the time of being taken the samples. Likewise, this study confirms that this species is able to create a pre-immunity condition to the anaplasmosis at an early age and to keep it for a long term. This way, they reach an enzootic balance in the production unit</p>
PDF (Spanish)

References

Soto K. Determinación de la prevalencia de Anaplasmosis en el ganado bovino faenado en la Empresa Metropolitana de Rastro de Quito (EMRQ) mediante la aplicación de las técnicas de diagnóstico: microscopia de frotis sanguíneos, reacción en cadena de polimerasa (PCR) y ensayo inmunoenzimático competitivo [tesis de pregrado]. Sangolquí: Escuela Politécnica del Ejercito; 2010

Toro M. Seroepidemiología de la hemoparasitosis en Venezuela. Veterinaria Trop. 1990;(4):1-13

Ríos L, Zapata R, Reyer J, Mejía J, Baena A. Estabilidad enzoótica de babesiosis bovina en la región de Puerto Berrío, Colombia. Rev. Cient. 2010;10(5):485-92

Contreras J, editor. Enfermedades de los bovinos, diagnóstico, tratamiento y control. 4ta ed. Barquisimeto: Bogue; 2009

Rodríguez-Vivas R, Cob-Galera L, Dominguez-Alpizar J. Hemoparásitos en bovinos, caninos y equinos en el laboratorio de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autónoma de Yucatán (1984-1999). Rev Biomed. 2010;(11):277-82

Doyle R, Fritzen A, Bottari N, Alves M, Da Silva AD, Morsch V, et al. Imidocarb dipropionate in the treatment of Anaplasma marginale in cattle: Effects on enzymes of the antioxidant, cholinergic and adenosinergic systems. Microb Pathog. 2016;(97):226-30. doi: 10.1016/j.micpath.2016.06.001

Tamasaukas R, Agudo-Castellanos L, Silva-Ravelo A, Florio-Luis J, Vintimilla-Tamasaukas M, Ribera-Pirela S. Hemoparasitosis en ganadería doble propósito venezolana, diagnóstico y control: una revisión. Agron Mesoam. 2010;21(2):367-81

Blood D, Radostits O, Henderson J. Medicina Veterinaria. México DF: Nueva Editorial Interamericana; 1986

Aubry P, Geale W. A Review of Bovine Anaplasmosis. Transbound Emerg Dis. 2011;58(1):1-30. doi: 10.1111/j.1865-1682.2010.01173.x

Pastoret P, Griebel P, Bazin H, Govaerts A, editores. Immunology of cattle. In: Handbook of vertebrate immunology. Nueva York: Academic Press; 1998. pp. 439-84

Bautista GCR, Angeles L, García-Ortiz M, García-Tapia D. Variation of peripheral blood BoCD2+, BoCD4+, and BoCD8+ lymphocytes, the BoCD4:BoCD8 index and IgG antibodies in bovines infected and rechallenged with isolates of Anaplasma marginale of Mexican Origin. Rev Latinoam Microbiol. 2000;42(3):101-9

Árias F. El Proyecto de Investigación: guía para su elaboración. 3.ra edición. Caracas: Editorial Episteme, Orial Ediciones; 1999

Fernández M, Canto G, Aboytes R. Prevalencia de anticuerpos séricos en contra de Babesia spp. y Anaplasma marginale en el municipio de Santiago Ixcuintla, Nayarit. Rev Vet Mex. 1995;4(26):407-9

Instituto Internacional de Cooperación para la Agricultura. Diagnóstico directo. En: Técnicas para el diagnóstico de babesiosis y anaplasmosis bovinas. San José de Costa Rica: IICA; 1987. p. 23-6

Basalo A, Parra O, Arraga C, León E, Guillén A. Establecimiento de la técnica serológica de inmunofluorescencia indirecta (IFI) como método de diagnóstico de la babesiosis bovina en el laboratorio de diagnóstico de la Policlínica Veterinaria de L.U.Z. Rev. Cient. 1995;5(2):87-94

Weiss D, Wardrop K. Normal Hematology of Cattle. En: Schalm´s Veterinary Hematology. 6.a edición. Iowa: Blackwell Publishing;2010. p. 5014-8300

Zapata R, Lara N, Baena A, Reyes J, Ríos L. Seroprevalencia de babesiosis bovina en la hacienda Vegas de la Clara, Gómez Plata (Antioquia). Rev Med Vet. 2008;(21):63-71

James M, Coronado A, López W, Meléndez R, Ristic M. Seroepidemiology of bovine anaplasmosis and babesiosis in Venezuela. Trop Anim Health Prod. 1985;17(1):9-18. doi: 10.1007/bf02356127

James M. Antibody levels during bovine hemoparasitic diseases: trypanosomiasis, anaplasmosis and babesiosis. Acta Cient Venez. 1983;34(3-4):185-90

Richey E, Palmer G. Bovine anaplasmosis. The Compendium Food Animal. 1990;(12):1661-9

De la Fuente J, García-García J, Blouin E, Saliki J, Kocan K. Infection of tick cells and bovine erythrocytes with one genotype of the intracellular Ehrlichia, Anaplasma marginale excludes infection with other genotypes. Clin Diag Lab Inmunol. 2002;9(3):658-68. doi: 10.1128/cdli.9.3.658-668.2002

Guillén A, León E, Aragort W, Silva M. Diagnóstico de hemoparásitos en el Instituto de Investigaciones Veterinarias período 19862000. Vet Trop. 2001;26(1):47-62

Díaz D, Valera Z, De Andrade E, Parra O, Escalona F, Ramírez R. Prevalencia de Anaplasma marginale del sector La Piñata, Municipio Cañada de Urdaneta estado Zulia, Venezuela. Rev. Cient. 2003;13(3):193-98

Añez-Rojas N, Romero O, Valbuena H, Clisante G, Rojas A, Bolívar A, Añez A. Detección de transmisión transplacentaria de Anaplasma marginale en Bovinos Asintomáticos. Rev. Cient. 2010;20(4):377-82

Eleizalde M, Reyna-Bello A, Caballero H, Vivas J. Evaluación y mejoramiento del ensayo inmunoenzimático (Elisa) para el diagnóstico de la anaplasmosis bovina. Rev. Cient. 2007;17(4):349-56

Cipolini M, Jacobo R, Draghi G, Echaide S. Detección de anticuerpos contra anaplasmosis bovina en rodeos de cría del noroeste de la Provincia de Corrientes, Argentina. Rev Vet. 2003; 14(2): 75-77

Medeiros V, Barbosa M, Leite A, Marry J, Almeida A, Santos S, Medeiros A, Riet-Correa F, Bahia M. Seroprevalence and risk factors for cattle anaplasmosis, babesiosis, and trypanosomiasis in a Brazilian semiarid región. Rev Bras Parasitol Vet. 2013;22(2):207-13. doi: 10.1590/S1984-29612013005000022

Barbosa J, De Albuquerque C, Garcia M, Bagarrão A, Marcelo W, Henrique A, et al. Detecção sorológica e molecular de Anaplasma marginale em búfalos na Ilha de Marajó, Pará. Pesq Vet Bras. 2014;34(1):11-4

Monroy M. Determinación de la seroprevalencia de Anaplasma marginale, a través del ensayo por inmunoabsorción ligado a enzimas (Elisa) en la población Bovina de la provincia de Galápagos, Ecuador [tesis de pregrado]. Quito: Universidad San Francisco; 2015

Lira-Amaya J, Polanco-Martínez D, Castañeda-Arriola R, Ramos-Aragón J, Lara-Hernández E, Preciado-De la Torre J, et al. Prevalencia serológica y molecular de Babesia bovis, Babesia bigemina y Anaplasma marginale en búfalos de agua mantenidos en zonas de alta incidencia de garrapatas. Fol Entomol Mex. 2017;(4):627-32

Álvarez J, Cantó J. Epidemiologia de la babesiosis. Soci Mex Parasitol. 1985;(1):55-72

Alonso M, Blandino T. Anaplasmosis bovina. La Habana: Consejo Científico Veterinario de Cuba; 1988

Galade K, Gartside M, Dimmock C, Zakrzewski H, Leatch G. Peripheral blood lymphocyte proliferate responses in cattle infected with or vaccinate against anaplasmosis. Parasitol Res. 1996;(82):551-62

Kocan K, De La Fuente J, Blouin E, Coetzee J, Ewing S. The natural history of Anaplasma marginale. Vet Parasitol. 2010;167(2-4):95-107. doi: 10.1016/j.vetpar.2009.09.012

Keywords

antibodies
dynamics
Anaplasma marginale
infection
indirect immunofluorescence