Resumen
<p>Históricamente, la especie bovina ha sido de vital importancia para el hombre como animal de abasto, por lo que el cuidado y protección a esta especie es muy importante. A nivel mundial existen diversas enfermedades que atacan el ganado bovino, entre las cuales se encuentra anaplasmosis bovina. La presente investigación no experimental de campo tiene como objetivo evaluar la dinámica de anticuerpos anti-Anaplasma y determinar en qué momento el animal presenta infección activa. Para ello, se escogió una población de 35 becerras ubicadas en la unidad de producción del municipio Crespo, en el estado de Lara, Venezuela. A las becerras, de 0 a 7 días de nacidas, se le extrajo la sangre en tubos con anticoagulante, para realizar frotis de capa blanca y determinación del hematocrito, y sin anticoagulante, para la inmunofluorescencia indirecta. Posteriormente, fueron muestreadas cada 15 días hasta obtener un total de 12 muestras por cada becerra. Para analizar los datos, fue utilizada la prueba estadística X2 del programa estadístico Epi Info versión 3.5.4. Se obtuvo un 79,05 % de positividad y 100 % de seropositividad para Anaplasma marginale. Se concluyó que los altos valores obtenidos con las pruebas serológicas son indicativos de animales con memoria inmunológica, lo que quiere decir que no necesariamente estarían infectados al momento del muestreo. Asimismo, se confirma la capacidad de la especie bovina de crear un estado de premunición ante la anaplasmosis a edades tempranas y mantenerla por un periodo prolongado, de modo que se encuentra una estabilidad enzoótica en la unidad de producción</p>Referencias
Soto K. Determinación de la prevalencia de Anaplasmosis en el ganado bovino faenado en la Empresa Metropolitana de Rastro de Quito (EMRQ) mediante la aplicación de las técnicas de diagnóstico: microscopia de frotis sanguíneos, reacción en cadena de polimerasa (PCR) y ensayo inmunoenzimático competitivo [tesis de pregrado]. Sangolquí: Escuela Politécnica del Ejercito; 2010
Toro M. Seroepidemiología de la hemoparasitosis en Venezuela. Veterinaria Trop. 1990;(4):1-13
Ríos L, Zapata R, Reyer J, Mejía J, Baena A. Estabilidad enzoótica de babesiosis bovina en la región de Puerto Berrío, Colombia. Rev. Cient. 2010;10(5):485-92
Contreras J, editor. Enfermedades de los bovinos, diagnóstico, tratamiento y control. 4ta ed. Barquisimeto: Bogue; 2009
Rodríguez-Vivas R, Cob-Galera L, Dominguez-Alpizar J. Hemoparásitos en bovinos, caninos y equinos en el laboratorio de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autónoma de Yucatán (1984-1999). Rev Biomed. 2010;(11):277-82
Doyle R, Fritzen A, Bottari N, Alves M, Da Silva AD, Morsch V, et al. Imidocarb dipropionate in the treatment of Anaplasma marginale in cattle: Effects on enzymes of the antioxidant, cholinergic and adenosinergic systems. Microb Pathog. 2016;(97):226-30. doi: 10.1016/j.micpath.2016.06.001
Tamasaukas R, Agudo-Castellanos L, Silva-Ravelo A, Florio-Luis J, Vintimilla-Tamasaukas M, Ribera-Pirela S. Hemoparasitosis en ganadería doble propósito venezolana, diagnóstico y control: una revisión. Agron Mesoam. 2010;21(2):367-81
Blood D, Radostits O, Henderson J. Medicina Veterinaria. México DF: Nueva Editorial Interamericana; 1986
Aubry P, Geale W. A Review of Bovine Anaplasmosis. Transbound Emerg Dis. 2011;58(1):1-30. doi: 10.1111/j.1865-1682.2010.01173.x
Pastoret P, Griebel P, Bazin H, Govaerts A, editores. Immunology of cattle. In: Handbook of vertebrate immunology. Nueva York: Academic Press; 1998. pp. 439-84
Bautista GCR, Angeles L, García-Ortiz M, García-Tapia D. Variation of peripheral blood BoCD2+, BoCD4+, and BoCD8+ lymphocytes, the BoCD4:BoCD8 index and IgG antibodies in bovines infected and rechallenged with isolates of Anaplasma marginale of Mexican Origin. Rev Latinoam Microbiol. 2000;42(3):101-9
Árias F. El Proyecto de Investigación: guía para su elaboración. 3.ra edición. Caracas: Editorial Episteme, Orial Ediciones; 1999
Fernández M, Canto G, Aboytes R. Prevalencia de anticuerpos séricos en contra de Babesia spp. y Anaplasma marginale en el municipio de Santiago Ixcuintla, Nayarit. Rev Vet Mex. 1995;4(26):407-9
Instituto Internacional de Cooperación para la Agricultura. Diagnóstico directo. En: Técnicas para el diagnóstico de babesiosis y anaplasmosis bovinas. San José de Costa Rica: IICA; 1987. p. 23-6
Basalo A, Parra O, Arraga C, León E, Guillén A. Establecimiento de la técnica serológica de inmunofluorescencia indirecta (IFI) como método de diagnóstico de la babesiosis bovina en el laboratorio de diagnóstico de la Policlínica Veterinaria de L.U.Z. Rev. Cient. 1995;5(2):87-94
Weiss D, Wardrop K. Normal Hematology of Cattle. En: Schalm´s Veterinary Hematology. 6.a edición. Iowa: Blackwell Publishing;2010. p. 5014-8300
Zapata R, Lara N, Baena A, Reyes J, Ríos L. Seroprevalencia de babesiosis bovina en la hacienda Vegas de la Clara, Gómez Plata (Antioquia). Rev Med Vet. 2008;(21):63-71
James M, Coronado A, López W, Meléndez R, Ristic M. Seroepidemiology of bovine anaplasmosis and babesiosis in Venezuela. Trop Anim Health Prod. 1985;17(1):9-18. doi: 10.1007/bf02356127
James M. Antibody levels during bovine hemoparasitic diseases: trypanosomiasis, anaplasmosis and babesiosis. Acta Cient Venez. 1983;34(3-4):185-90
Richey E, Palmer G. Bovine anaplasmosis. The Compendium Food Animal. 1990;(12):1661-9
De la Fuente J, García-García J, Blouin E, Saliki J, Kocan K. Infection of tick cells and bovine erythrocytes with one genotype of the intracellular Ehrlichia, Anaplasma marginale excludes infection with other genotypes. Clin Diag Lab Inmunol. 2002;9(3):658-68. doi: 10.1128/cdli.9.3.658-668.2002
Guillén A, León E, Aragort W, Silva M. Diagnóstico de hemoparásitos en el Instituto de Investigaciones Veterinarias período 19862000. Vet Trop. 2001;26(1):47-62
Díaz D, Valera Z, De Andrade E, Parra O, Escalona F, Ramírez R. Prevalencia de Anaplasma marginale del sector La Piñata, Municipio Cañada de Urdaneta estado Zulia, Venezuela. Rev. Cient. 2003;13(3):193-98
Añez-Rojas N, Romero O, Valbuena H, Clisante G, Rojas A, Bolívar A, Añez A. Detección de transmisión transplacentaria de Anaplasma marginale en Bovinos Asintomáticos. Rev. Cient. 2010;20(4):377-82
Eleizalde M, Reyna-Bello A, Caballero H, Vivas J. Evaluación y mejoramiento del ensayo inmunoenzimático (Elisa) para el diagnóstico de la anaplasmosis bovina. Rev. Cient. 2007;17(4):349-56
Cipolini M, Jacobo R, Draghi G, Echaide S. Detección de anticuerpos contra anaplasmosis bovina en rodeos de cría del noroeste de la Provincia de Corrientes, Argentina. Rev Vet. 2003; 14(2): 75-77
Medeiros V, Barbosa M, Leite A, Marry J, Almeida A, Santos S, Medeiros A, Riet-Correa F, Bahia M. Seroprevalence and risk factors for cattle anaplasmosis, babesiosis, and trypanosomiasis in a Brazilian semiarid región. Rev Bras Parasitol Vet. 2013;22(2):207-13. doi: 10.1590/S1984-29612013005000022
Barbosa J, De Albuquerque C, Garcia M, Bagarrão A, Marcelo W, Henrique A, et al. Detecção sorológica e molecular de Anaplasma marginale em búfalos na Ilha de Marajó, Pará. Pesq Vet Bras. 2014;34(1):11-4
Monroy M. Determinación de la seroprevalencia de Anaplasma marginale, a través del ensayo por inmunoabsorción ligado a enzimas (Elisa) en la población Bovina de la provincia de Galápagos, Ecuador [tesis de pregrado]. Quito: Universidad San Francisco; 2015
Lira-Amaya J, Polanco-Martínez D, Castañeda-Arriola R, Ramos-Aragón J, Lara-Hernández E, Preciado-De la Torre J, et al. Prevalencia serológica y molecular de Babesia bovis, Babesia bigemina y Anaplasma marginale en búfalos de agua mantenidos en zonas de alta incidencia de garrapatas. Fol Entomol Mex. 2017;(4):627-32
Álvarez J, Cantó J. Epidemiologia de la babesiosis. Soci Mex Parasitol. 1985;(1):55-72
Alonso M, Blandino T. Anaplasmosis bovina. La Habana: Consejo Científico Veterinario de Cuba; 1988
Galade K, Gartside M, Dimmock C, Zakrzewski H, Leatch G. Peripheral blood lymphocyte proliferate responses in cattle infected with or vaccinate against anaplasmosis. Parasitol Res. 1996;(82):551-62
Kocan K, De La Fuente J, Blouin E, Coetzee J, Ewing S. The natural history of Anaplasma marginale. Vet Parasitol. 2010;167(2-4):95-107. doi: 10.1016/j.vetpar.2009.09.012
Palabras clave
dinámica
Anaplasma marginale
infección
inmunofluorescencia indirecta